【盐胁迫对小麦幼苗POD活性和同工酶的影响】小麦幼苗过氧化物酶同工酶
摘要:研究了0.4 mol/L氯化钠(NaCl)处理后4个河南广泛种植的小麦品种幼苗根和叶中过氧化物酶(POD)活性及其同工酶酶谱的变化情况。结果表明,4个小麦品种在盐胁迫处理后,根和叶中的POD活性均有不同程度的增强,且无论是对照还是盐胁迫处理,根中的POD活性都要高于其叶中的POD活性。POD同工酶酶谱在不同小麦品种间的不同组织中存在差异性,根中的POD同工酶酶带总体染色比叶中深;经盐胁迫处理后,根和叶中的酶带颜色均有不同程度的加深。
关键词:盐胁迫;小麦;POD活性;同工酶
中图分类号:S512.1.01;Q945.78;Q554+.6 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2011)09-1759-03
Effect of Salt Stress on Peroxidase and Isoenzyme in Wheat Seedlings
SONG Yang,PEI Dong-li
(Department of Life Science, Shangqiu Normal University, Shangqiu 476000,Henan,China)
Abstract: The change of peroxidase(POD) isoenzyme zymogram and activity of POD in the roots and leaves of seedlings of four wheat varieties treated with 0.4 mol/L NaCl was studied. The results indicated that the zymogram of POD isoenzyme was different in different tissues of each wheat varieties. The zymogram showed deeper staining in roots than that in the leaves. After salt stress, some zymogram bands became deeper both in wheat roots and leaves,indicating that salt-stress could enhance the POD activity in roots and leaves. Moreover, POD activity in the roots was higher than that in the leaves, both in the control group and the salt-stress group.
Key words: salt stress;wheat;peroxidase activity; isoenzyme
同工酶(Isozyme,Isoenzyme)广义是指生物体内催化相同反应而分子结构及理化性质不同的酶,几乎存在于所有生物体中[1]。同工酶作为一类蛋白质,广泛存在于生物的同一种属,同一个体的不同组织,同一组织或同一细胞中。同工酶具有多态性,同一种内的不同种个体,甚至同一个体的不同部位、不同发育时期,其同工酶都有差异[2]。同工酶技术是生物化学和分子生物学不断发展的产物,在遗传育种、生理学、病理学、系统分类学等学科都有广泛的应用[3]。
过氧化物酶(POD)及其同工酶作为植物细胞内重要的组成成分,其主要功能为:参与活性氧代谢过程;参与木质素和木栓质的合成;参与生长素的降解;参与许多物质如谷胱甘肽、草酰乙酸、氢醌、酪氨酸、阿魏酸等酚类化合物的氧化;参与环境胁迫[4]。POD活性的高低可以反映植物生长发育及内在代谢情况,同时也是植物抗性好坏的标志之一[5]。
近年来,盐胁迫环境下植物基因表达的研究日益受到重视[6]。盐胁迫是一种常见的逆境胁迫,土壤盐渍化是世界粮食生产的大害,是限制农作物生产和产量的重要因素之一。全世界大约有占全部土地面积25%的土壤盐渍化,次生盐渍化土壤面积也在不断扩大[7,8]。近些年发现,抗盐性的决定因素普遍存在于各种植物中,植物对盐胁迫的反应是一个复杂的生理过程[9]。高盐胁迫加剧植物体活性基团的产生,过量的活性物质会诱发膜脂质过氧化,造成植物体氧化性损伤,破坏膜结构,并使线粒体破损,液泡增大[10]。
豫东平原作为河南省重要的农产区,盐胁迫在当地分布较为普遍,对当地的小麦生产有着重要的影响[11]。本试验以河南省广泛种植的4个小麦品种为材料,研究在0.4 mol/L的NaCl胁迫处理下[12],各小麦品种在胁迫前后POD活性及同工酶酶谱的变化情况,旨在探究其变化规律,以期为筛选出具有较强抗盐性的小麦品种提供生化依据,为小麦抗盐基因的筛选与克隆提供参考。
1材料与方法
1.1材料
选用河南省广泛种植的具有代表性的4个小麦品种,分别是新麦18、烟辐188、周麦18、濮麦9号。
1.2方法
1.2.1材料的处理在4个小麦品种中各选取50粒成熟饱满的种子,用1 g/L的氯化汞(HgCl2)溶液消毒处理10 min,流水冲洗10 min,25 ℃催芽24 h后,将萌发一致的种子播种于装有石英砂的花盆中,置于温室中培养,昼温(28±2)℃,夜温(20±2)℃,相对湿度80%。每天浇灌1/2 Haogland营养液,幼苗生长至一叶一心期(约10 d)时用0.4 mol/L的NaCl溶液浇灌,持续处理3 d,以不含NaCl溶液浇灌为对照。每处理进行3次重复。盐胁迫处理3 d后取样,测定POD的活性并分析其同工酶酶谱变化情况。
1.2.2POD活性测定各称取小麦幼苗的根和叶0.5 g,加入2 mL 50 mmol/L的PBS液(pH值7.8,内含0.1 mmol/L EDTA和1% PVP),冰浴研磨至匀浆,再加入PBS液冲洗2~3次,使最终体积为
5 mL,匀浆液于4 ℃下10 000 r/min离心10 min,取出上清液,即为酶提取液,用于POD活性测定和POD同工酶电泳。
酶活性的测定反应混合液为:0.05 mol/L磷酸缓冲液50 mL(pH值7.8),30% H2O2 0.028 mL,0.2%愈创木酚0.019 mL。取3 mL反应混合液,加入0.1 mL酶液,于25 ℃条件下反应3 min。在470 nm下读数,每隔1 min读取1次,共记录4次数据,取平均值;以每分钟OD470变化0.01为1个POD活性单位。计算公式如下[13]:酶活性=ΔOD470×D/0.01×FW×t。ΔOD470为反应时间内吸光度的变化值;FW为植物鲜重(g);t为反应时间(1 min),D为稀释倍数,酶活单位为U/(g・min)。
1.2.3POD同工酶电泳POD同工酶电泳采用北京六一垂直板电泳槽进行。分离胶浓度10%,浓缩胶浓度4%。在浓缩胶中稳定电压为90V,进入分离胶后稳定电压为200V,3~4 h完成电泳。同工酶电泳的染色参照醋酸-联苯胺法染色[14]。将显色后的胶板浸入水中,次日用数码相机拍照,进行分析。
2结果与分析
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文 2.1盐胁迫对小麦幼苗POD活性的影响
由图1可知,盐胁迫处理后,4个小麦品种的幼苗根和叶中的POD活性均高于对照的小麦幼苗根和叶片中的POD活性;表明4个小麦品种的根部或叶片在经过了高浓度的盐胁迫处理后,POD活性都有不同程度的增强。由图1还可发现,不论是盐胁迫处理还是对照的各品种小麦,幼苗根部的POD活性均高于叶中的POD活性。
2.2盐胁迫对小麦幼苗POD同工酶的影响
盐胁迫后,4种小麦幼苗的POD同工酶酶谱见图2。由图2可知,POD同工酶酶谱在不同小麦品种间的不同组织中存在差异性,根中的POD同工酶酶带总体染色比叶中的深。根据酶带的集中程度和迁移率的大小,可将酶带分为A、B、C等3个区。A区有1条主带,B区有2条主带,C区有2条主带;其中B区、C区的条带染色较深属于强带,A区的条带染色较浅属于弱带。与对照相比,盐胁迫处理后,各品种小麦幼苗根和叶中的POD同工酶酶带均有不同程度增强;烟辐188经盐胁迫处理后,根较对照根的POD同工酶的条带数及着色程度均显著增加;濮麦9号经盐胁迫处理后,叶较对照叶的POD同工酶的条带数及着色程度也明显增加。
3讨论
植物体内各细胞、组织、器官的基因组成完全一致,但基因的表达存在时间、空间上的差异。同工酶是基因表达的产物,它是生物体为适应细胞代谢的多方面要求而形成的。在生长发育过程中,受到盐胁迫时,植物会从代谢的不同层次和水平上作出相应的应答,在遗传上则表现为基因表达的改变。盐胁迫时,在细胞内代谢产物的诱导或阻遏作用下,诱导有关基因的表达而相应地关闭某些基因,以适应盐胁迫下细胞内的特殊代谢反应。本研究发现,盐胁迫后4个小麦品种幼苗根部和叶中部分酶带明显增加,表明了盐胁迫下POD同工酶基因表达发生了明显的变化,诱导产生了新的同工酶,这可能是植物体通过控制基因的转录、翻译影响表达,从而达到植物体对逆境的抵抗作用,提高植物的抗逆性。
幼苗阶段是植物对外界逆境较为敏感的时期,也是植物一生最关键的时期,直接影响植物的形态建成和果实产量。植物在逆境胁迫,如盐胁迫下会产生大量的活性氧,包括羟自由基、超氧阴离子和H2O2等,会对细胞造成损伤,如氧化性很强的羟自由基会引发或加剧膜脂质过氧化产生丙二醛(MDA),从而造成细胞膜系统损伤,使膜透性增高。因此,植物体会应激地产生有效的保护酶系统和自由基清除剂,以清除这些有毒物质。一般认为POD、超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)是植物酶促反应体系的保护酶,它们协同作用,防御活性氧对细胞造成伤害,抑制膜脂质过氧化,以减轻逆境对植物体的伤害[15]。贺岩等[16]研究了不同基因型小麦对盐胁迫的不同反应机制,结果表明,盐胁迫严重抑制了小麦植株生长,降低了种子的萌发率,且盐胁迫后,POD活性增加,由脂质过氧化所形成的MDA积累缓慢,细胞膜受到的损伤较小,并推测POD可能是耐盐小麦体内清除活性氧自由基的一种重要的保护酶。本研究结果表明,经0.4 mol/L的NaCl处理后,通过POD活性检测分析,4种小麦幼苗的根和叶中POD活性显著增加;通过POD同工酶电泳分析,4个小麦品种幼苗处理后的酶带数目和着色程度有不同程度增加。本试验的研究结果进一步证实了POD可能在小麦耐盐机制中参与一定的生理功能,研究其机理为进一步提高小麦的抗盐性,筛选小麦抗盐品系有一定意义。本研究只是从POD一个指标来看,植物的抗盐机理是十分复杂的,还应参考SOD、CAT等其他方面的数据。
参考文献:
[1] 雷泞菲,苏智先,陈劲松. 同工酶技术在植物研究中的应用[J]. 四川师范学院学报(自然科学版),2000,21(4):321-325.
[2] 杜晓明,刘新田,杜晓光,等. 不同产地红皮云杉酯酶同工酶分析[J]. 林业科技,1995,20(1):6-9.
[3] 娄群峰,陈劲枫,任刚,等. 硝酸银和乙烯利对黄瓜叶片中3种氧化还原酶同工酶和酶活性影响的比较[J]. 植物生理学通讯,2003,39(6):580-584.
[4] 田国忠,李怀方,裘维蕃. 植物过氧化物酶研究进展[J]. 武汉植物学研究,2001,19(4):332-344.
[5] 胡能书,万贤国. 同工酶技术及其应用[M]. 长沙:湖南科学技术出版社,1985.104-109.
[6] 张建锋,李吉跃,宋玉民,等. 植物耐盐机理与耐盐植物选育研究进展[J]. 世界林业研究,2003,16(2):16-22.
[7] 高永生,王锁民,张承烈. 植物盐适应性调节机制的研究进展[J]. 草业学报,2003,12(2):1-6.
[8] 杨晓英,刘友良,罗庆云,等. 盐胁迫下野生大豆叶片中Na+、Cl-积累导致活性氧伤害[J]. 大豆科学,2002,22(2):83-87.
[9] 应天玉,刘国生,姜中珠. 植物耐盐的分子机理[J]. 东北林业大学学报,2003,31(1):31-33.
[10] 刘宛,胡文玉,谢甫绨,等. NaCl胁迫及外源自由基对离体小麦叶片O和膜脂过氧化的影响[J]. 植物生理学通讯,1995,31(1):26-29.
[11] 王西川. 豫东平原盐渍土的遥感分析[J]. 遥感信息,1992(4):24-27.
[12] 孙静,王宪泽. 盐胁迫对小麦过氧化物酶同工酶基因表达的影响[J]. 麦类作物学报,2006,26(1):42-44,61.
[13] 张治安,张美善,蔚容海. 植物生理学实验指导[M]. 北京:中国农业科学技术出版社, 2004.134.
[14] 中国科学院上海植物生理研究所,上海市植物生理学会. 现代植物生理学实验指南[M]. 北京:科学出版社,1999.263-265.
[15] 陈贻竹,帕特森 B. 低温对植物叶片中超氧物歧化酶、过氧化氢酶、过氧化氢水平影响[J]. 植物生理与分子生物学学报,1988(4):323-328.
[16] 贺岩,李志岗,李新鹏,等. 盐胁迫条件下两种基因型小麦生长及保护酶活性的反应[J]. 山西农业大学学报,2005,25(1):42-44.
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