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【C3和C4植物中PEPC的生物信息学分析】C3与C4植物的主要区别

发布时间:2019-02-23 04:43:04 影响了:

  摘要:PEPC是C4光合途径中的关键酶之一,为研究C3和C4植物PEPC功能上的差异,利用一系列的生物信息学软件分别分析了4种C3和C4植物PEPC基因编码蛋白的氨基酸组成、等电点、结构域、二级结构、空间结构等性质,并进行两类植物蛋白质的比对。结果表明,PEPC基因编码蛋白为不稳定蛋白质;二级结构主要是以无规则卷曲为主。同时揭示出C3和C4植物PEPC存在一定差异。用ESyPred3D的建模服务器进行PEPC结构的三维建模,预测得到一个同源性较高的蛋白质结构数据1JQO chain A,同源性为99.7%,从而构建目标序列的三级结构。利用PROCHECK对建模结果进行检测,模拟得到的玉米PEPC蛋白质的三维结构的氨基酸残基有94.2%位于Ramachandran点图中合理区域,模拟得到的玉米PEPC的三维结构是可靠的。
  关键词:C3植物;C4植物;PEPC;生物信息学
  中图分类号:Q945.11;Q617文献标识码:A文章编号:0439-8114(2011)12-2558-05
  
  Bioinformatic Analysis of PEPC in C3 and C4 Plants
  
  WU Mei1,2,ZHANG Bian-jiang1,YANG Ping1,WANG Rong-fu2,CHEN Quan-zhan1
  (1. College of Biochemistry and Enviromental Engineering,Nanjing Xiaozhuang University,Nanjing 211171,China;
  2. College of Life Science,Anhui Agriculture University,Hefei 230036,China)
  
  Abstract: To explore the functional differences between C3 and C4 PEPC, PEPC proteins of four different C3 and C4 plants were analyzed by various bioinformatic tools to predict the protein properties, such as amino acids composition, pI, domains, secondary and spatial structure; and the PEPC protein sequences of C3 and C4 plants were aligned. The results showed that the PEPC proteins were unstable and the secondary structures were mainly composed of random coil, indicating some differences between PEPCs of C3 and C4 plants. A highly homologous(99.7%) protein structure data 1JQO chain A was predicted by three-dimensional structure modeling of PEPC by ESyPred3D, thus facilitated the tertiary structure building of target sequence. The tertiary structure model of Zea mays PEPC was further checked by PROCHECK programmer, and showed that 94.2% of the amino acid residues were located in the most favored regions in Ramachandran plot, indicating that the simulated three-dimensional structure of Zea mays PEPC was reliable.
  Key words:C3 plant; C4 plant; PEPC; bioinformatics
  
  与C3植物相比,C4植物具有光合效率高、CO2补偿点低、几乎没有光呼吸等优点,特别在强光、高温、干旱等条件下,C4植物具有明显的生长优势及较高的水分和营养利用率,生物学产量也较高[1]。C4途径包含多种酶类如磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(Phosphoenolpyruvate carboxylase,PEPC)、NADP-苹果酸脱氢酶(NADP-malate dehydrogenase,NADP-MDH)、NADP-苹果酸酶(NADP-malic enzyme,NADP-ME)和丙酮酸磷酸二激酶(Pyruvate ortho-phosphate dikinase,PPDK)等,这些酶有效地固定外部及其光呼吸释放的CO2[2]从而使加氧酶活性受到抑制,降低了氮素的消耗,提高了水分利用率,大大提高了光合生产力[3]。近年来与光合作用途径相关的关键酶的基因已分别从玉米、高粱和苋菜等C4植物中被克隆,并开展了C4基因的遗传转化工作[4]。值得注意的是,Ku等[5]首次成功地将玉米C4光合途径的关键酶PEPC基因导入C3作物水稻中,获得了高表达的转基因水稻株,有效地提高了PEPC活性。罗素兰等[6]和张桂芳等[7]分别克隆了C4植物甘蔗和稗草PEPC基因并进行了功能验证。Chen等[8]又成功地将玉米C4型PEPC基因导入小麦中并实现有效表达,展示了转光合关键酶PEPC基因改造C3作物的应用前景。
  Hermans[9]在菊科黄花菊属(Flaveria)中发现PEPC有C3型、类似C3型、类似C4型、C3-C4中间型、C4型等不同代谢类型,分析它们的PEPC基因,发现同源性极高,C4植物PEPC基因与C3植物PEPC基因有71%的同源性,由于表达量不同而活性高低不同。前人的研究表明玉米的PEPC有C4型、C3型和根型3种类型[10];高粱的PEPC基因家族有3个成员CP21、CP28、CP46[11];Flaveria的PEPC基因家族由ppcA、ppcB和ppcC 3个亚家族组成[12]。尽管PEPC也是C3植物中另一主要羧化酶,为三羧酸循环补充草酰乙酸起回补反应的功能,但以C3植物的形态结构,PEPC还不能完成CO2净固定直接生成碳水化合物,因为三羧酸循环的碳与PEPC结合是一种损失,必须在CO2固定后再进入Calvin循环。而在C4和CAM植物中,PEPC介导β羧化反应,把CO2固定为草酰乙酸,后转变为四碳酸[13]。在结构上除了N端有调节磷酸化的基团外,来源于不同生物的PEPC其反应机制本质上是相同的[14]。但不同来源的PEPC在不同植物体内有着不同的生化和生理特性,并致使光合作用产生较大的差异。通过对PEPC进行生物信息学的分析,来进行基因的结构和功能的比较,预测产生的结构和功能的差异,以期为将C4关键酶转入C3作物或者通过修饰C3作物的基因来改造C3作物,从而有效提高作物的光合生产力。
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   1材料与方法
  1.1供试材料
  数据资料来源于National Center for Biotechnology Information(NCBI)核酸及蛋白质数据库中已注册的核酸序列及对应的氨基酸序列:玉米(Zea mays,AJ536629);稗草(Echinochloa crus-galli,AY995212);甘蔗(Saccharum officinarum,AJ293346);高粱(Sorghum bicolor,XM_002438476);拟南芥(Arabidopsis thaliana,AY210895);水稻(Oryza sativa,AF271995);棉花(Gossypium hirsutum,EU032328);大豆(Glycine max,AB008540)。
  1.2试验方法
  利用生物信息学数据库和互联网上的软件进行分析,用Protparam[15]分析PEPC基因编码蛋白的氨基酸序列组成、分子量、等电点等理化性质;在NCBI[16]上对其保守结构域进行分析;用SOPMA[17]预测其二级结构;用PROSITE[18]分析蛋白质功能;以ESyPred3D[19]程序预测三级结构;利用检测蛋白质质量结构的软件PROCHECK[20,21]对预测的蛋白质三维结构进行分析。
  2结果与分析
  2.1PEPC一级结构分析
  2.1.1PEPC理化性质分析用Protparam预测PEPC基因编码的蛋白质的理化性质[15]。这8种植物PEPC的理论推导半衰期为30 h(体外,哺乳动物的网织红细胞内);大于20 h(体内,酵母细胞内);大于10 h(体内,大肠杆菌)。C4植物总的带负电残基(Asp+Glu)和总的带正电残基(Arg+Lys)略低于C3植物,总的亲水性平均系数(GRAVY)平均略高于C3植物,为-0.45~-0.30,预测该蛋白质属于亲水性蛋白质。C4植物不稳定参数低于C3植物,但两者均为不稳定蛋白质。8种植物PEPC蛋白质中含量较多的氨基酸基本相同,为Leu、Glu、Arg、Ala。其中排第三和第四的Arg和Ala的含量略有不同,在C4植物中排第五的为Gly或Val,而C3植物中则为Asp,所有植物都不含有Asx(B)、Glx(Z)、Xaa(X)。C4植物酸碱性氨基酸的比例略小于C3植物。C4植物中非极性氨基酸、极性氨基酸含量略高于C3植物(表1)。
  2.1.2PEPC氨基酸序列分析利用DNAMAN[22]进行多序列比对,比较8种植物的氨基酸序列。参数选择:完全比对;多重比对;空位开放罚分:10;空位延伸罚分:1;延迟趋异序列:30%;蛋白质加权GONNET。蛋白质空位参数试用亲水罚分和残基特异罚分。在C3和C4植物中不同的氨基酸位点共有22处,见图1中用浅色或深色为背景的位点,其中“…”表示省略的氨基酸。据此将进一步研究这些氨基酸位点,观察造成的空间结构活性区域有无变化。
  2.2PEPC二级结构分析
  用SOPMA对PEPC二级结构进行预测,PEPC结构元件以α-螺旋、无规则卷曲为主,延伸链和β-折叠散布于整个蛋白质中。没有发现如310 helix、Pi helix、Beta bridge、Bend region等其他结构(表2)。对于一级结构中C3、C4植物不同处,在进行二级结构预测后,也发现有3处不同(图1)。在图1的阴影中,C4植物在E(谷氨酸)与S(丝氨酸)处表现为c(无规则卷曲)与h(α-螺旋)的链接、C3植物表现为E与S均为c,而之后的S与D(天冬氨酸)处为c与h的链接。C4植物在P(脯氨酸)到V(缬氨酸)之间均为c的链接,C3植物R(精氨酸)到V之间有两个c变成了e(延伸链),C4植物在K(赖氨酸)和两个Q(谷氨酰胺)之间是表现为两个t(β-折叠)与e的链接,而C3植物KQE之间为两个c和e的链接。分析这些二级结构的不同,为以后的三级结构的比对提供了基础,还有利于进一步去研究是否由于这些位点的不同而造成了PEPC在C3和C4植物中的差异。
  2.3PEPC氨基酸序列结构域功能的分析
  通过PROSITE分析,8种植物都具有两个符合PEPC活性的位点[VTI]-x-T-A-H-P-T-[EQ]-
  x(2)-R-[KRHAQ](H是活性残基位点);[IVLC]-M-[LIVM]-G-Y-S-D-S-x-K-[DF]-[STAG]-G(K是活性残基位点)和一个保守序列M-F-H-G-R-G-G-T-V-G-R-G-G-G-P-T-H-L-A-I-L-S-Q-P-P-[DE]-T-I-H-G-S-[LP]-R-V-T-V-Q-G-E-V-I-E-Q-S-F-G-E-E-H-L。说明这几种植物中都具有PEPC活性,只是活性位点和保守序列的起始位点有所区别(表3),这应该是和它们的氨基酸序列起始位置有关。
  2.4PEPC的三级结构预测
  将玉米PEPC氨基酸序列上传到ESyPred3D的建模服务器中进行PEPC结构的三维建模,预测得到一个同源性较高的蛋白质结构数据1JQO chain A,同源性为99.7%,符合同源建模条件,从而构建目标序列的三级结构(图2)。
  利用PROCHECK对模建结果进行检测,作Ramachandran点图,统计位于最适合区、附加允许区、一般允许区和不允许区残基的比率。Ramachandran点图能够将蛋白质的主链中的phi和psi的二面角角度以图示的方式显示。最深色区域是最理想的phi角和psi角分布区域,而白色区域则为不合理区域。因而如果预测的蛋白质残基的二面角有90%以上位于最深色区域,则表明其有稳定的空间结构。图3是玉米PEPC蛋白质的Ramachandran点图,其中94.2%位于最适合区,5.7%位于附加允许区,0.1%位于一般允许区,没有氨基酸位于不允许区域。从图中可以看出,模拟得到的玉米PEPC蛋白质的三维结构的氨基酸残基有94.2%位于Ramachandran点图中合理区域,从理论上表明模拟得到的玉米PEPC的三维结构是可靠的。
  3讨论
  根据经典的C4光合知识,C4植物有叶肉细胞和维管束鞘细胞的分化,进行C4光合途径所必需的多酶系统分别定位于此两类具有叶绿体的细胞中,而且C4光合途径是受多基因控制且各基因独立遗传,C3植物存在的内源的C4循环酶及转运蛋白质,都具有明确的生理功能,因而通过个别基因的过量表达增加其产物的活性,不能在C3植物中建立起完整的C4循环,还可能干扰C3植物的正常代谢,因此,把C3植物转化为C4植物是不可能的,但是Jiao等[23]通过转PEPC基因,水稻具有了类似初级的C3-C4中间型的特征。用生物信息学方法对已知PEPC序列进行比对分析,从而对其结构和功能进行推断和预测,为我们将PEPC基因转入C3作物以有效提高作物的光合生产力提供了尽可能多的信息,能为选择合适的试验方法提供理论参考,为进一步对该基因的功能研究提供线索。此外要培育类C4作物,进一步提高光合效率,可能需要Kranz结构,以免光呼吸CO2的外溢,这些都有待进一步研究。
  参考文献:
  [1] BROWN R H,BASSETT C L,CAMERON R G,et al. Photosynthesis of F1 hybrids between C4 and C3-C4 species of Flaveria[J]. Plant Physiol,1986,82:211-217.
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   [2] VON CAEMMERER S,FURBANK R T. The C4 pathway:an efficient CO2 pump[J]. Photosynthesis Research,2003,77:191-207.
  [3] FUKAYAMA H,AGARIE S,NOMURA M,et al. High level expression of maize C4-specific pyruvate,Pi dikinase and its light activation in transgenic rice plants[J]. PlantCellPhysical,1999,40:116-123.
  [4] MATSUOKA M,YAMAMOTO N. Induction of mRNAs for phosphoenolpyruvate carboxylase and pyruvate,orthophosphate dikinase in leaves of a C4plantexposed to light[J]. Plant Cell Physiol,1989,30(4):479-486.
  [5] KU M S,AQARIE S,NOMURA M,et al. High-level expression of maize phosphoenolpyruvate carboxylase in transgenic rice plants[J]. Nat Biotechnol,1999,17(1):76-80.
  [6] 罗素兰,陈如凯,潘大仁,等. 高光效基因植物表达载体的构建[J]. 生物技术通报,2003(4):38-41.
  [7] 张桂芳,赵明,丁在松,等. 稗草磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPCase)基因的克隆与分析[J].作物学报,2005,31(10):1365-1369.
  [8] CHEN X Q,ZHANG X D,LIANG R Q,et al. Expression of the intact C4 type PEPC gene cloned from maize in transgenic winter wheat[J]. Chin Sci Bull,2004,49(20):1976-1982.
  [9] HERMANS J,WESTHOFF P. Analysis of expression and evolutionary relationships of phosphoenol-pyruvate carboxylase genes in Flaveria trinervia(C4)and F. pringlei(C3)[J]. Molecular and General Genetics,1990,224(3):459-468.
  [10] DONG L Y,MASUDA T,KAWAMURA T,et al. Cloning expression and characterization of a root-form phosphoenolpyruvate carboxylase from Zea mays:comparison with the C4 form enzyme[J]. Plant and Cell Physiology,1998,39(8):865-873.
  [11] LEPINIEC L, KERYER E, PHILIPPE H, et al. Sorghum phosphoenolpyruvate carboxylase gene family:structure,function and molecular evolution[J]. Plant Molecular Biology,1993,
  21(3):487-502.
  [12] ENGELMANN S,BL?�SING O E,GOWIK U,et al. Molecular evolution of C4 phosphoenolpyruvate carboxylase in the genus Flaveria―a gradual increase from C3 to C4 characteristics[J]. Planta,2003,217(5):717-725.
  [13] SAGE R F. The evolution of C4 photosynthesis[J]. New Phytologist,2004,161(2):341-370.
  [14] MATSUMURA H,XIE Y,SHIRAKATA S,et al. Crystal structures of C4 form maize and quaternary complex of E. coli phosphoenolpyruvate carboxylases[J]. Structure,2002,10(12):1721-1730.
  [15] GASTEIGER E,HOOGLAND C,GATTIKER A,et al. Protein identification and analysis tools on the ExPASy server[A].WALKER J M. The Proteomics Protocols Handbook[C].Totowa:Humana Press,2005. 571-607.
  [16] MARCHLER-BAUER A,BRYANT S H. CD-Search:protein domain annotations on the fly[J]. Nucleic Acids Res,2004, 32:327-331.
  [17] TARAFDAR P K,VEDANTAM L V,KONDREDDY A,et al. Biophysical investigations on the aggregation and thermal unfolding of harpin(Pss) and identification of leucine-zipper-like motifs in harpins[J]. Biochim Biophys Acta,2009,
  1794(11):1684-1692.
  [18] JONASSEN I,EIDHAMMER I,GRINDHAUG S H,et al. Searching the protein structure databank with weak sequence patterns and structuralconstraints[J]. Molecular Biology,2000,304(4):599-619.
  [19] LAMBERT C,L?�ONARD N,DE BOLLE X,et al. ESyPred3D:Prediction of proteins 3D structures[J]. Bioinformatics,2002,18(9):1250-1256.
  [20] LASKOWSKI R A,MACARTHUR M W,MOSS D S,et al. PROCHECK:a program to check the stereochemical quality of protein structures[J]. J Appl Cryst,1993,26:283-291.
  [21] LASKOWSKI R A,RULLMANNN J A,MACARTHUR M W,et al. AQUA and PROCHECK-NMR:Programs for checking the quality ofprotein structures solved byNMR[J]. JBiomol NMR,1996,8(4):477-486.
  [22] SONG J Y,YAO H,LI Y,et al. Authentication of the family polygonaceae in Chinese pharmacopoeia by DNA barcoding technique[J]. J Ethnopharmacol,2009,124(3):434-439.
  [23] JIAO D M,KUANG T Y,LI X,et al. Physiological characteristics of the primitive CO2 concentrating mechanism in PEPC transgenic rice[J]. Sci China(Ser C),2003,46(4):438-446.
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