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黄孢原毛平革菌产木素过氧化物酶发酵条件的优化 黄孢原毛平革菌

发布时间:2019-02-23 04:45:10 影响了:

  摘要:对白腐菌(Phanerochaete chrysosporium)产木素过氧化物酶的发酵条件进行了研究。在单因素试验的基础上用正交试验进行工艺参数的优化。结果表明,木素过氧化物酶的最佳培养条件为培养13 d、接种0.5 mL,料液比1∶2.5(W/V,g∶mL)、培养温度25℃,酶活为771 U/mL。
  关键词:白腐菌 Phanerochaete chrysosporium;木素过氧化物酶;正交试验
  中图分类号:Q55文献标识码: A文章编号:0439-8114(2011)11-2305-03
  
  Optimization of Production of Lignin Peroxidase by Phanerochaete chrysosporium
  
  WANG Min1,2,WANG Jie2
  (1.Department of Life Science, Hengshui University, Hengshui 053000,Hebei,China;
  2.College of Food Science and Technology, Agricultural University of Hebei, Baoding 071001,Hebei,China)
  
  Abstract: The production craft of lignin peroxidase by white-rot fugi Phanerochaete chrysosporium was investigated. On the basis of single factor experiments, orthogonal experiment was used for the optimization of fermentation parameters. The result indicated that the optimal conditions were, the time of culture, 13d; the amount of inoculation, 0.5 mL; solid to liquid ratio, 1∶25(W/V,g∶mL)temperature, 25℃; lip activity, 771 U/mL.
  Key words: white-rot fugi Phanerochaete chrysosporium; Lignin peroxidase; orthogonal experiment
  
  白腐菌是已知的惟一能在纯系培养中有效地将木质素降解为CO2和H2O的一类微生物[1,2],是迄今为止最有效、最主要的木质素降解微生物,在自然界的碳素循环中起着关键作用[3]。重要的木素降解酶有3种,木素过氧化物酶(Lignin peroxidase,LiP,EC.1.11.1.7)、锰过氧化物酶(Manganese-dependent peroxidase,MnP,EC.1.11.1.7)和漆酶(Laccase,EC.1.10.3.2)。LiPs是该酶系的主要成分,在木质素降解中起关键性作用。大多数白腐菌仅产生2种甚至1种分解木质素的酶[4-6]。木素降解酶不仅降解木质素,而且通过催化自由基链式反应,对环境中难降解有机污染物具有高效、广谱的降解功能。故利用白腐菌处理工业废水、生物制浆、土壤修复等是目前生物技术应用研究中的热点课题。对黄孢原毛平革菌分泌胞外酶的条件进行优化,旨在对白腐菌的工业化应用和生物质的高效利用提供一定的理论依据。
  1材料与方法
  1.1材料
  甜高粱秸秆,于2008年10月取自河北农业大学标本园,经烘箱干燥后用中药粉碎机粉碎,过40目筛,备用;黄孢原毛平革菌(Phanerochaete chrysosporium),购自中国工业微生物菌种保藏中心;PDA培养基: 去皮马铃薯200 g,加水1 000 mL煮沸30 min,滤去马铃薯,滤液补足至1 000 mL,葡萄糖20 g,琼脂15 g,121℃灭菌15 min。主要用于活化菌种;固态发酵培养基:甜高粱秸秆粉20 g,葡萄糖0.4 g,(NH4)2SO4 0.06 g,水40 g,121℃灭菌15 min。
  1.2方法
  1.2.1不同发酵条件对木质素酶活影响的正交试验根据单因素试验,确定最佳水平。进行正交试验,因素与水平设计见表1。
  1.2.2酶活测定粗酶液的制备:在秸秆发酵过程中,每2 d取出2 g发酵样品,加入缓冲液浸提,30℃水浴振荡浸提1 h。然后过滤,离心(3 500 r/min,15 min)后取上清液用于酶活测定。
  木素过氧化物酶(LiP)活力测定[7]:取0.2 mL藜芦醇溶液(10 mmol/L),0.4 mL酒石酸缓冲液(250 mmol/L,pH值为3.0)与0.4 mL粗酶液混匀,即得1 mL反应液。于30℃向此反应液中加20 μL H2O2溶液(20 mmol/L)启动酶促反应,并在310 nm波长下测定反应1 min前后的反应液吸光度变化。一个酶活力单位(U)定义为每分钟氧化藜芦醇产生1 μmol藜芦醛所需的酶量。
  2结果与分析
  2.1不同发酵时间对酶活性的影响
  不同发酵时间对黄孢原毛平革菌产木素酶活的影响见图1。由图1可知,发酵时间为14 d时,木素过氧化物酶酶活最高,为672 U/mL。
  2.2不同碳源对酶活性的影响
  碳源是构成菌体碳架及能量的来源,真菌细胞干重的1/2是由碳组成。碳源在真菌生长过程中占很重要的地位。白腐菌在降解木素时需要外加碳源,一般为糖类,高碳/低氮有利于木素降解[8]。试验以不同碳源取代基础培养基中的葡萄糖,考察它们对木质素酶合成的影响。在初始培养基中分别采用不同碳源(果糖、葡萄糖、蔗糖、乳糖、可溶性淀粉、糊精),测定产酶状况,发现酶活力随不同碳源而异,如图2所示。添加葡萄糖产生木素过氧化物酶的酶活最高,为720 U/mL,因此确定葡萄糖为木素过氧化物酶最佳碳源。
  2.3不同氮源对酶活性的影响
  在初始培养基中分别采用不同氮源(尿素、碳酸氢铵、草酸铵、柠檬酸三铵、硫酸铵、硝酸铵、磷酸氢二铵、氯化铵),考察氮源对酶活的影响。由图3可知,在以硝酸铵为氮源的培养物中木素过氧化物酶酶活最高,为722 U/mL。
  2.4不同温度对酶活的影响
  微生物的增殖受温度的影响较大。由图4可知,在20、25、30℃下,木素过氧化物酶酶活差异较大,以25℃酶活最高。在此温度下木素过氧化物酶酶活为722 U/mL。
  2.5不同接种量对酶活的影响
  接种量小会使发酵周期延长;接种量大能促进菌体迅速增殖,但会使培养基黏度增大,影响溶氧,衰老细胞增加,发酵后劲不足,发酵产物产量较小。由图5可知,最佳接种量为1.0 mL,木素过氧化物酶酶活为696 U/mL。
  2.6不同料液比对酶活的影响
  固态发酵基质含水量是影响固态发酵的成功与否的关键。发酵初期,适当的湿度可以促进孢子的萌发和菌丝体的生长,湿度过大一方面会影响培养基的通透性,不利于散热和气体流通;另一方面, 若湿度过大,湿热灭菌时培养基凝结成块,菌丝体只能在团状固体物料的表面生长,不能深入到内部,降低了菌丝体对固体物料的利用率。由图6可知,物料与水分比例为1∶2.5(W/V,g∶mL,下同)时酶活最高,木素过氧化物酶酶活为699 U/mL。
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   2.7正交试验
  表2为正交试验结果。由表2可知,影响木素过氧化物酶酶活的主次顺序为D>B>A>C,即培养温度>接种量>培养时间>料液比。最佳发酵条件为A2B1C3D2,即培养时间为10 d,接种量为0.5 mL, 料液比为1∶2.5,培养温度为25℃,在此条件下进行验证试验,重复3次,木素过氧化物酶酶活为771 U/mL。
  表3是正交试验的方差分析结果。由表3可知培养时间、接种量、料液比、培养温度4个因素中只有培养温度对木素过氧化物酶酶活的影响显著。
  3结论
  白腐菌系好氧菌,培养方式对产酶影响非常明显。在试验中采用振荡培养白腐菌的方式,通过正交试验确定了木素过氧化物酶的最佳培养条件为培养10 d、接种0.5 mL、料液比1∶2.5、培养温度25℃,酶活可达771 U/mL。
  白腐菌是一种能降解木质素的真菌,那么利用木质素类农业废弃物如各种作物的秸秆作为培养基进行固体发酵,既满足了白腐菌生长的原始生态环境而有利于其生长,同时又可以对农业废物进行再利用,这样不仅降低了大规模生产漆酶的成本,更重要的是减少了农业污染。
  参考文献:
  [1] 孙汉鹏. 木腐菌及过氧化物酶在纸浆和煤炭生物处理方面的应用[D]. 济南:山东大学,2005.
  [2] KUMAR R, SINGH S, SINGH O V. Bioconversion of lignocellulosic biomass: biochemical and molecular perspectives [J]. J Ind Microbiol Biotechnol,2008,35:377-391.
  [3] 刘友勋,郜金荣,黄娟. 白腐菌在两种固体基质上的漆酶产量及同工酶活性比较研究 [J]. 氨基酸和生物资源,2007,29(3):33-35.
  [4] ERIKSSON K E, BLANCHETTE R A, ANDER P. Microbial and enzymatic degradation of wood and wood components [M]. Berlin Heidelberg: Springer-Verlag., 1990.
  [5] ORTH A B, ROYSE D J, TIEN M. Ubiquity of lignin-degrading peroxidases among various wood-degrading fungi [J]. Appl Environ Microbiol,1993,59:4017-4023.
  [6] HATAKKA A. Lignin-modifying enzymes from selected white-rot fungi: production and role in lignin degradation [J]. FEMS Microbiology Reviews,1994,13:125-135.
  [7] TIEN M, KIRK T K. Lignin peroxidase of Phanerochaete chrysosporium [J]. Methods in Enzymology,1988,161(2):238-249.
  [8] 阮芳勇. 青霉菌P6产木素过氧化物酶的发酵条件优化[D]. 北京:中国农业大学,2005.
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