当前位置:首页 > 演讲稿 > [多氯联苯降解酶的分离纯化及酶学性质研究] 多氯联苯的物质有哪些
 

[多氯联苯降解酶的分离纯化及酶学性质研究] 多氯联苯的物质有哪些

发布时间:2019-02-23 04:45:33 影响了:

  摘要:采用硫酸铵盐析浓缩、透析、Sephadex G-150凝胶过滤层析,对表皮葡萄球菌产生的多氯联苯(PCBs)降解酶进行分离纯化。粗酶经30%~80%饱和度硫酸铵沉淀法纯化后比酶活可提高到442.29 U/mg;经透析后的比酶活可提高到480.75 U/mg;最后经凝胶层析法纯化后的比酶活可提高到6 903.57 U/mg,纯化倍数为35.9,回收率为30.56%。酶催化反应的最适pH值为7.0;在pH值6.0~9.0,温度为30~45℃时具有较好的稳定性;Cu2+、Fe2+对酶有一定的抑制作用。
  关键词:PCBs降解酶;纯化;酶学性质
  中图分类号:X172;Q814.1文献标识码:A文章编号:0439-8114(2011)11-2207-03
  
  Purification and Characterization of the PCBs Degrading Enzyme
  
  ZHENG Qing-feng,SHAO Shan-shan,LI Hao,ZHAO Xiao-xiang
  (School of Environmental Science and Engineering, Dong Hua University, Shanghai 201620, China)
  
  Abstract: The PCB-degrading enzyme was isolated and purified from the fermentation broth of Staphylococcus epidermidis by ammonium sulfate precipitation, dialysis and Sephadex G-150 gel chromatography. The activity of the PCB-degrading enzymes could increase to 442.29 U/mg after purified by 30%~80% of (NH4)2SO4precipitations, and could increase to 480.75 U/mg after dialysis. The activity could finally increase to 6 903.57 U/mg after purified by gel chromatography, as the purification fold was 35.9; and the recovery rate was 30.56%. The optimum pH of PCB-degrading enzyme was 7.0, and it was stable at pH 6.0~9.0 and 30~45 ℃. Cu2+ and Fe2+ had some inhibition to this enzyme.
  Key words: PCB-degrading enzymes; purification; enzymatic property
  
  多氯联苯(PCBs)是与苯环上碳原子相连接的氢被氯不同程度地取代而形成的一类联苯化合物,广泛用作电力设备(如变压器、电容器)的绝缘液、油漆、塑料及无碳复写纸的添加剂等。在生产消费过程中,PCBs被排放到环境中,引起了大范围的长期污染,污染通过食物链对生物和人类产生影响,是一种致癌剂、致畸剂和致突变剂[1,2]。目前,PCBs污染的修复方法有高温热分解处理、微波、生物降解等。微生物法因低成本、无二次污染成为研究热点[3-6]。在国内,微生物法研究侧重于PCBs降解菌的筛选和降解特性方面;而在国外,除上述两点外还有学者采用植物和微生物结合共同修复PCBs污染[7,8]。在PCBs降解菌株中报道较多的有假单胞菌属、红球菌属、伯克霍尔德菌属和肠杆菌属[9-14]。本研究对表皮葡萄球菌产生的PCBs降解酶进行分离与纯化,并对其酶学性质进行了初步探究;以期为PCBs降解酶的研究提供理论参考。
  1材料与方法
  1.1材料及培养基
  试验用菌株表皮葡萄球菌从含有大量的油漆颗粒和清洗剂的污水中筛选获得。
   无机盐培养基:磷酸二氢钾0.5 g/L,磷酸氢二钾0.5 g/L,硫酸镁0.2 g/L,氯化钙0.1 g/L,氯化钠0.2 g/L,硫酸铵1.0 g/L,pH值7.0。富集培养基:在无机盐培养基中加入蛋白胨2.0 g/L和联苯1.0 g/L。
  1.2粗酶液的制备
  将菌体投入含联苯1.0 g/L的150 mL富集培养基中,30 ℃、150 r/min培养72 h。用中速滤纸过滤发酵液除去未溶联苯,所得菌液在4 ℃、8 000 r/min条件下离心15 min收集菌体。用pH值7.4的Tris-HCl溶液清洗菌体2次,悬浮。将菌体悬浮液置于冰浴中,超声破碎细胞30 min,间隙时间30 s,工作时间30 s;所得即为粗酶液,分别测定其蛋白质含量和酶活性。
  1.3蛋白质含量的测定
  采用Bradford考马斯亮蓝法测定,以牛血清白蛋白为标准蛋白质绘制标准曲线。
  1.4酶活力的测定
  取pH值7.4的Tris-HCl 3 mL,1 mmol/L联苯 1 mL,加入粗酶液1 mL,35 ℃反应1 h后,加入2.0 mL 10%的TCA终止反应。4 ℃、8 000 r/min条件下离心15 min,取上清液于290 nm处测其吸光度。对照组为反应前加入TCA。酶活力单位定义为:在上述条件下,1 mL酶液催化底物引起吸光度降低0.01为1个酶活力单位(U)。比酶活=酶活力单位/蛋白质含量,单位为U/mg。
  1.5硫酸铵盐析
  向5 mL粗酶液中依次加入饱和度为0%、30%、50%、60%、70%、80%、90%、100%的硫酸铵,进行盐析沉淀,搅拌使其完全溶解,4 ℃静置过夜。4 ℃、
  10 000 r/min离心15 min,收集上清液,测出蛋白质含量和酶活力,作盐析曲线图。
  根据盐析曲线图,得到一级盐析饱和度和二级盐析饱和度。在粗酶液中加入硫酸铵至饱和度为一级,静置过夜,4 ℃、8 000 r/min离心15 min。在上清液中继续添加硫酸铵至二级饱和度,静置过夜,4 ℃、10 000 r/min离心30 min,沉淀用pH值7.4的Tris-HCl溶解,装入透析袋,4 ℃静置过夜,测定蛋白质含量和酶活力。
  1.6真空冷冻干燥
  在真空冷冻干燥箱中干燥,时间不少于24 h。
  1.7Sephadex G-150 凝胶层析
  采用0.2 mol/L pH值6.8的磷酸缓冲液洗脱,洗脱速度0.5 mL/min,每管收集3 mL;用核酸蛋白检测仪检测280 nm处光吸收。收集合并保存。
  1.8PCBs降解酶酶学性质研究
  1.8.1最适pH值和酸碱稳定性在不同pH值的Tris-HCl中测定酶活力,以最高的酶活力计为100%,其他酶活力以相对酶活力(相对酶活力指所测得的酶活力值与最高酶活力值的百分比,下同)表示;确定酶的最适pH值及其酸碱稳定性。
  1.8.2最适温度和温度稳定性在不同温度下测定酶活力,以最高酶活力计为100%,其他酶活力以相对酶活力表示;确定酶的最适温度及温度稳定性。
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   1.8.3金属离子对酶活力的影响在加入不同种金属离子后,分别测定酶活力,以最高的酶活力计为100%,其他酶活力以相对酶活力表示;确定金属离子对酶活的影响。
  2结果与分析
  2.1硫酸铵盐析
  不同饱和度的硫酸铵对粗酶液的盐析情况见图1。由图1可知,饱和度在30%~80%内,酶活力下降较快,酶蛋白沉淀主要发生在此区间;饱和度>80%时,酶活力下降变得缓慢。因此,确定30%和80%分别为一级和二级盐析饱和度。粗酶经硫酸铵分级盐析,可去除其中杂蛋白质,同时也可浓缩酶液。
  2.2凝胶层析
  硫酸铵盐析试验后的样品用Sephadex G-150进一步分离纯化,如图2所示,只出现一个比较明显的蛋白峰,说明经盐析和透析后得到的成分较纯。
  2.3纯化结果
  各步纯化结果见表1。可知PCBs降解酶经过盐析、透析和Sephadex G-150层析,得到较纯的酶,其比酶活由粗酶的192.30 U/mg提高到纯酶的
  6 903.57 U/mg,纯化35.9倍,回收率为30.56%。
  2.4PCBs降解酶酶学性质
  2.4.1酶反应的最适pH值由图3可知,PCBs降解酶在pH值为7时,其相对酶活力达到最大值。此菌株所产酶属于中性酶,这与相关报道的酶反应的最适pH值较类似[15]。另外,酶的最适pH值并不是固定常数,受酶的纯度、底物、缓冲液的种类等影响。
  2.4.2酶反应的pH稳定性由图4可知,该酶在酸性环境中不稳定,但在碱性环境中有着较高的稳定性。pH值小于6时,相对酶活力明显下降;pH值为6时,相对酶活力高于80%;pH值为7时,相对酶活力达到最大,为100%;pH值大于7时,其对酶活力的影响并不大。
  2.4.3酶的热稳定性由图5可知,PCBs降解酶在30 ℃条件下酶活力较稳定,保温3 h后相对酶活力仍高于90%;45 ℃条件下保温1 h后相对酶活力降至55%,而保温3 h后相对酶活力降为20%;在高于60 ℃条件下PCBs降解酶迅速失活,保温1 h时相对酶活力降至30%。
  2.4.4金属离子对酶反应的影响由图6可知,Cu2+、Fe2+对酶活力的影响较大,起到了一定的抑制作用;K+、Mg2+、Ca2+、Zn2+对酶活影响不大;Na+、Al3+对酶活可能有一定的促进作用。
  3小结
  表皮葡萄球菌发酵产生的PCBs降解酶经分离纯化后,纯化倍数达35.9,回收率为30.56%。通过酶学性质的研究,PCBs降解酶在pH值为6.0~9.0,温度为30~45℃时有较高的稳定性,其最适pH值为7.0,Cu2+、Fe2+对酶活的影响较大,有一定的抑制作用。
  参考文献:
  [1] WEBER K, GOERKE H. Persistent organic pollutants (POPs) in antarctic fish: Levels, patterns, changes[J]. Chemosphere, 2003,53(6):667-678.
  [2] HOPE B, SCATOLINI S, TITUS E. Bioconcentration of chlorinated biphenyls in biota from the North Pacific Ocean [J]. Chemosphere, 1998,36(6):1247-1261.
  [3] MUIR D C G, NORSTROM R J. Geographical differences and time trends of persistent organic pollutants in the Arctic [J]. Toxicology Letters, 2000,112-113:93-101.
  [4] 赵毅,沈艳梅,马萧颖. 热分解技术在修复多氯联苯污染土壤中的应用[J]. 电力环境保护,2009,25(2):57-59.
  [5] 王晔,王光龙. 微波降解水相中的多氯联苯[J]. 化工进展,2008,27(7):1085-1089.
  [6] 胡本涛,马丽,刘蕊,等. 环境中多氯联苯来源、结构关系与处理方法[J]. 化学与黏合,2009,31(4):44-46.
  [7] SYTVESTRE M, MACEK T, MACKOVA M. Transgenic plants to improve rhizoremediation of polychlorinated biphenyls (PCBs) [J]. Current Opinion in Biotechnology, 2009,20(2): 242-247.
  [8] VRCHOTOVA B, FRANCOVA K, MACKOVA M, et al. Transformation of PCB degradation products (chlorobenzoic acids) by plant cells[J]. Journal of Biotechnology,2007,
  131(S):242-249.
  [9] YANG X Q, SUN Y, QIAN S J. Biodegradation of seven polychlorinated biphenyls by a newly isolated aerobic bacterium (Rhodococcus sp. R04) [J]. J Ind Microbiol Biotechnol, 2004,31(9):415-420.
  [10] 任何军,高松,张玉玲. 多氯联苯降解菌Pseudomonas sp. DN2的分离鉴定及其降解特性研究[J]. 环境科学,2009,
  30(3):857-863.
  [11] 赵�,张兰英,周佳欣. 降解多氯联苯嗜盐菌的分离和降解特性[J]. 吉林大学学报(地球科学版),2007,37(2):380-383. [12] 王维,沈波. 多氯联苯降解菌Rhodococcus sp. RHA1的功能基因[J]. 杭州师范大学学报(自然科学版),2008,7(5):372-375.
  [13] 孙立波,张兰英,赵�,等. 一株多氯联苯降解菌的分离鉴定及基因分型[J]. 吉林大学学报(理学版),2007,45(4):691-695.
  [14] 贾凌云. 多氯联苯降解菌的筛选及其降解性能研究[D]. 大连:大连理工大学,2008.
  [15] 赵�. 降解PCBs酶制剂及其对污染土壤的修复研究[D]. 长春:吉林大学,2007.
  注:本文中所涉及到的图表、注解、公式等内容请以PDF格式阅读原文
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文

猜你想看
相关文章

Copyright © 2008 - 2022 版权所有 职场范文网

工业和信息化部 备案号:沪ICP备18009755号-3