当前位置:首页 > 作文大全 > 什么是免疫细胞【香菇多糖对黄颡鱼免疫细胞活性的影响】
 

什么是免疫细胞【香菇多糖对黄颡鱼免疫细胞活性的影响】

发布时间:2019-02-23 04:47:33 影响了:

  摘要:试验选取540尾黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco),对其连续投喂含不同水平香菇多糖(Lentinan,LNT)的配合饲料8周。采用Percoll密度梯度离心等技术,对黄颡鱼头肾巨噬细胞与外周血白细胞进行分离纯化,使用NBT还原法、Griesse试剂显色法与MTT法测定头肾巨噬细胞呼吸爆发活性与外周血白细胞的增殖能力,以探讨香菇多糖对黄颡鱼免疫细胞活性的影响。结果表明香菇多糖各水平组均能提高黄颡鱼头肾巨噬细胞的氧呼吸爆发活性,且1 200~1 500 mg/kg水平组提高作用极显著(P<0.01);香菇多糖各水平组能提高黄颡鱼头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性,其中600 mg/kg水平组活性显著提高(P<0.05),900~1 500 mg/kg水平组活性提高效果极显著(P<0.01);投喂香菇多糖还能显著提高黄颡鱼外周血白细胞的增殖能力(P<0.05),且600~1 500 mg/kg水平组促进作用极显著(P<0.01)。可见,香菇多糖可以有效地提高黄颡鱼免疫细胞的活性。
  关键词:黄颡鱼;香菇多糖;免疫细胞活性;呼吸爆发;细胞增殖
  中图分类号: R979.5 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2011)09-1855-04
  
  Effects of Lentinan on the Activity of Immunological Cells of Yellow Catfish (Pelteobagrus fulvidraco)
  
  BAI Dong-qing,WU Xuan,ZHU Guo-xia,NING Bo
  (Tianjin Key Laboratory of AQU-Ecology and Aquaculture, National Demonstration Center of Teaching Practice, Tianjin Agricultural University, Tianjin 300384, China)
  
  Abstract: 540 yellow catfish(Pelteobagrus fulvidraco) were selected and fed with different levels of Lentinan for 8 weeks. Then the head kidney macrophages and peripheral blood leukocytes of yellow catfish were separated by Percoll continuous density gradient centrifugation. Furthermore, NBT reduction, Griesse reagent colorimetry and MTT assay were used to evaluate the respiratory burst activity of head kidney macrophages and proliferation of peripheral blood leukocytes in order to discuss the effects of LNT on the activity of immunological cells of yellow catfish. The results indicated that oxygen respiratory burst activity of head kidney macrophages was enhanced at all the levels of LNT; and extremely increased at the levels of between 1 200 mg/kg and 1 500 mg/kg(P<0.01). The nitrogen respiratory burst activity of all the LNT groups was also increased, and 600 mg/kg LNT level increased significantly(P<0.05), and was significantly improved at 900~1 500 mg/kg LNT level(P<0.01). The activity of proliferation of peripheral blood leukocytes of all the LNT groups was enhanced(P<0.05); and was significantly enhanced at the levels of from 600 mg/kg to 1 500 mg/kg(P<0.01). In conclusion, LNT could effectively enhance the activity of immunological cells of yellow catfish.
  Key words: yellow catfish(Pelteobagrus fulvidraco); Lentinan(LNT); activity of immunological cells; respiratory burst activity; proliferation
  随着人们对水产品质量要求的不断提高与治疗用抗生素长期使用导致养殖品种耐药性增强两者间矛盾的深化,寻求一种低毒、安全、高效的新型免疫增强剂替代药物,已经成为水产养殖领域中的重要任务。香菇多糖(Lentinan,LNT)是从香菇子实体中分离出的天然活性成分[1],并因其具有良好的抗肿瘤、抗病毒、调节机体免疫力、刺激干扰素形成等功效逐渐引起了人们的关注。但目前,关于使用香菇多糖增强机体免疫力的研究还主要集中在临床与畜禽养殖中,在水产动物中使用甚少,而在黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)中还未见报道。基于此,本研究选取优质经济鱼类――黄颡鱼作为研究对象,对其投喂含不同水平香菇多糖的配合饲料,通过检测其头肾巨噬细胞的呼吸爆发活性与外周血白细胞的增殖能力,寻求适宜的添加水平,并为日后黄颡鱼疾病防治及免疫增强剂的开发提供理论依据。
  1材料和方法
  1.1试验材料
  1.1.1试验用鱼及养殖条件2龄健康黄颡鱼540尾取自天津农学院养殖渔场,平均体重(61.8±2.0)g,平均体长(19.5±2.0)cm。试验鱼饲养于架设在养殖池中的1.5 m×1.5 m×1.0 m的18个网箱中,每箱随机投放黄颡鱼30尾(雌雄各半)。香菇多糖以300、600、900、1 200、1 500 mg/kg 5个水平添加于饲料中,每组3个平行,以不添加多糖的基础饲料(粗蛋白38.14%,粗灰分12.37%,粗脂肪3.08%,水分12.36%)为对照。试验期间水温保持在(26±2)℃,每天连续充氧,试验期间每天换水1/3左右。日投饵率为2%,每日投喂3次。
  1.1.2多糖的制备试验用香菇多糖粗提物(纯度50%)购于陕西方晟生物科技公司,粗多糖采用Sevage法[2]去除蛋白,并采用DEAE-纤维素柱层析和Sephadex G-200凝胶柱进一步纯化香菇多糖[3],最终采用苯酚-硫酸法[4]测定多糖的有效含量。香菇多糖经过逐步分离纯化后,最终的纯度大于90%。
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   1.1.3试剂L-15培养基、脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)、Hanks溶液、佛波豆寇乙酸酯(Phorbol Myristate Acetate,PMA)、硝基蓝四氮唑(NBT),肝素钠、超氧化物歧化酶标准品和噻唑兰[3-(4,5-Dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide,MTT]购于Sigma公司;新生小牛血清购自Gibco公司。链霉素/青霉素购于北京鼎国生物技术有限责任公司。硅石-聚乙烯吡咯烷酮(polyvinyl pyrrolidone,Percoll)、细胞培养板购于Pharmacia公司;Griess试剂购于上海碧云天生物技术有限公司。
  1.2试验方法
  1.2.1黄颡鱼头肾巨噬细胞与外周血白细胞的分离使用MS-222麻醉后,采用Bayne法[5]分离黄颡鱼头肾巨噬细胞。使用Percoll密度梯度法[6]分离头肾巨噬细胞,并使用台盼蓝进行细胞活性检测并计数,以确保活细胞的数量大于90%,调整细胞浓度为1.0×107个/mL。27 ℃培养备用。在无菌的条件下进行尾静脉抽血,外周血白细胞的分离方法同头肾巨噬细胞。
  1.2.2免疫细胞活性指标检测头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性的测定采用NBT法[7]。每个多糖水平组细胞设8个平行,以添加LPS(500 μg/mL)的细胞液作为阳性对照,以检测细胞在培养过程中的活性。使用Therm 3001型酶联免疫检测仪,在620 nm下,测定吸光值。头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性的测定采用Griess试剂法[8],其他操作同氧呼吸爆发活性测定。在540 nm下测定吸光值。外周血白细胞的增殖采用MTT法[9]检测,每个多糖水平组细胞设12个平行,以添加LPS(500 μg/mL)的细胞液作为阳性对照,培养24 h后,在570 nm下测定各孔光吸收值,记录结果。每个指标检测中每个水平均检测6尾鱼。
  1.2.3数据处理试验数据用平均值±标准误表示,数据分析采用SPSS17.0软件包中的单因素方差分析(one-way-ANOVA)。
  2结果与分析
  2.1香菇多糖对黄颡鱼头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性的影响
  连续投喂黄颡鱼含不同水平香菇多糖的饲料8周后,检测其头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性发现:较高浓度的LPS(阳性对照)能显著提高头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性(P<0.01),这说明试验中培养的细胞状态良好;与空白对照组相比,各水平香菇多糖均能提高黄颡鱼头肾巨噬细胞的氧呼吸爆发活性,在1 200~1 500 mg/kg水平时提高作用极显著(P<0.01);其中1 200 mg/kg和1 500 mg/kg组间差异不大(P>0.05)(图1,表1)。从提高黄颡鱼头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性的角度考虑,饲料中香菇多糖的适宜添加量为1 200 mg/kg。
  2.2香菇多糖对黄颡鱼头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性的影响
  用不同水平的香菇多糖饲料投喂黄颡鱼8周后,测定各组黄颡鱼头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性。与图1相似,阳性对照组(LPS组)巨噬细胞氮呼吸爆发活性明显提高(P<0.01);黄颡鱼头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性随香菇多糖水平的增加而提高。与空白对照相比,除300 mg/kg多糖组氮呼吸爆发活性提高不明显外,其余各组氮呼吸爆发活力依次分别提高23.94%(P<0.05),34.29%、57.8%、71.5%(P<0.01),且1200 mg/kg和1500 mg/kg水平组间活性变化不大(P>0.05)(图2,表1)。从头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性提高角度分析,选择1 200 mg/kg香菇多糖水平添加到饲料中较适宜。
  2.3香菇多糖对黄颡鱼外周血白细胞增殖的影响
  用含有不同水平的香菇多糖饲料投喂黄颡鱼8周后,黄颡鱼外周血白细胞增殖活性明显提高,阳性对照组(LPS作用组)外周血白细胞增殖明显提高;与空白对照组相比,各多糖水平组黄颡鱼外周血白细胞增殖能力依次分别提高1.4(P<0.05)、2.3、2.6、3.4与4.0倍(P<0.01),且1 500 mg/kg水平组的增殖能力高于阳性对照组(P<0.01),(见图3,表1)。可见,从提高黄颡鱼外周血白细胞增殖角度考虑,饲料中添加香菇多糖适宜水平为1 200~1 500 mg/kg。
  3讨论
  3.1香菇多糖提高免疫细胞活性的作用机理
  香菇多糖具有能抵抗多种细菌、病毒和寄生虫入侵的免疫学活性,这种免疫作用并非直接攻击病原体,而是通过激活免疫细胞,促使其成熟、分化和增殖,改善机体平衡,从而达到增强机体自身免疫作用的目的[10]。其提高免疫细胞活性作用机理可以概括为以下两点:①香菇多糖具有活化巨噬细胞的作用,而活化后的巨噬细胞可分泌活性氧、一氧化氮、白介素等与免疫应答及炎症有关的生物活性物质。②香菇多糖是一种胸腺依赖型T细胞导向并有巨噬细胞参与的特殊免疫佐剂[11],可以促进淋巴细胞活化因子(LAE)产生,刺激或恢复辅助性T细胞活性功能,提高淋巴细胞转化率,促进抗体形成,也可被称为免疫复原物质。
  3.2香菇多糖对动物免疫细胞活性的影响
  国内外学者在香菇多糖提高陆上动物机体免疫细胞活性方面已进行了一定的研究,但在水产动物上的研究相对较少,尤其是在黄颡鱼中的使用尚未见报道。体外培养时,香菇多糖能明显促进鲤鱼头肾巨噬细胞的氧呼吸爆发活性,且100 μg/mL浓度组效果最佳;能极显著地提高鲤鱼外周血白细胞的增殖能力;但对氮呼吸爆发活性影响不大,且存在高浓度抑制现象[12]。香菇多糖协同ConA或LPS能显著促进小鼠脾淋巴细胞的增殖[13];还可诱导小鼠腹腔巨噬细胞NO生成量增加,并可增高iNOS活性,且呈明显的剂量依赖关系[14,15]。体内注射香菇多糖能明显提高荷瘤小鼠外周血白细胞的总数,尤以淋巴细胞数增加最为显著[16]。投喂香菇多糖可提高鸡血液中淋巴细胞的转化水平[17];静脉注射香菇多糖还可以增加小鼠与家兔因放、化疗而减少的白细胞数量[18]。本试验中口服香菇多糖能促进黄颡鱼头肾巨噬细胞氧呼吸爆发活性和外周血白细胞的增殖能力,这与上述研究结果相互印证,而本试验中头肾巨噬细胞氮呼吸爆发活性与香菇多糖量存在明显的剂量依赖关系,高浓度组作用极显著,这与曹丽萍等[12]研究结果不符,究其原因可能是与鱼的种类、香菇多糖添加方式或添加剂量不同有关。
  参考文献:
  [1] 吕国英,范雷法,张作法,等. 香菇多糖研究进展[J]. 浙江农业学报,2009,21(2):183-188.
  [2] STAUB A M. Removal of proteins from polysaccharides[J]. Methods Incarbohydr Chem,1965(5):5.
  [3] 燕航, 钟耀广, 王淑琴,等. 香菇子实体多糖分离纯化的研究[J]. 食品研究与开发,2006,27(8):61-63.
  [4] 张惟杰. 糖复合多糖生化研究技术 [M]. (第二版).杭州:浙江大学出版社,1994.
  [5] BAYNE C J. Pronephric leucocytes of Cyprinus carpio: Isolation, separation and characterization [J]. Veterinary Immunology and Immunopathology,1986,12(1-4):141-151.
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文   [6] SHIM K J, JUNG K H, CHUNG M K, et al. Development of an in vitro environmental monitoring system by using immune cells [J]. J Health Sci,2002,48(2):130-133.
  [7] SECOMBES C J. Isolation of salmonid macrophages and analysis of their killing activity[A]. STOLEN J S, FLETCHER T C, ANDERSON D P, et al. Techniques in fish immunologyⅢ[C]. New Jersey: SOS Publications,1990:138-154.
  [8] GREEN L C, WAGNER D A, GLOGOWSKI J, et al. Analysis of nitrate, nitrite, and [15N] nitrate in biological fluids[J]. Anal Biochem,1982,126(1):131-138.
  [9] MOSMANN T. Rapid colorimetric assay for celluar grow than survival: Application to proliferation and cytotoxicity assay[J]. J Immunol Methods,1983,65(1-2):55-63.
  [10] 程良斌. 香菇多糖的作用机理及临床应用[J]. 中西医结合肝病杂志,1997,7(1): 59-61.
  [11] 俞黎晓. 香菇多糖的药理作用及免疫增强机理[J]. 浙江畜牧兽医,2008(4):12-13.
  [12] 曹丽萍,丁炜东,张柳,等. 香菇多糖对鲤鱼离体培养免疫细胞的活性调剂作用[J]. 农业微生物技术学报,2008,16(4): 616-621.
  [13] 王国秀,蔺威鸣,赵瑞芳,等. 6种多糖对小鼠免疫细胞活性作用的比较研究[J]. 卫生研究,2007,37(5):577-580.
  [14] 侯敢,黄迪南,祝其锋. 香菇多糖对巨噬细胞一氧化氮合酶生成和细胞内还原型谷胱甘肽的影响[J]. 中草药,2002,33(3):245.
  [15] 丁航,侯敢,周克元. 香菇多糖对巨噬细胞一氧化氮和一氧化氮合酶活性的影响[J]. 广东药学,2003,13(4):32-33.
  [16] 林卡莉,吕军华,徐鹰,等. 香菇多糖调节荷瘤小鼠的免疫功能[J]. 解剖学杂志,2009,32(2):166-169.
  [17] 施伟领,徐慧,叶秀娟,等. 香菇多糖对鸡球虫3-1E重组蛋白的免疫增强作用[J]. 中国兽医学报, 2009,29(11):1444-1449.
  [18] 商捷,刘军,李可欣,等. 香菇多糖对放化疗致动物白细胞减少症的影响[J]. 沈阳药科大学学报, 2006,23(12):791-796.
本文为全文原貌 未安装PDF浏览器用户请先下载安装 原版全文

猜你想看
相关文章

Copyright © 2008 - 2022 版权所有 职场范文网

工业和信息化部 备案号:沪ICP备18009755号-3